При исследовании носоглоточной слизи на менингококк пользуются изогнутым стерильным ватным тампоном. Тампон вводят концом вверх за мягкое нёбо в носоглотку и проводят 3 раза по задней стенке.
У больных ангинами при подозрении на дифтерию материал берут с миндалин сухим тампоном. При наличии налетов материал следует брать с границы здоровых и пораженных тканей, слегка нажимая на них тампоном.
Материал на сухих тампонах доставляется в лабораторию в течение 2 ч. Материал доставляется в сумках с грелками.
Исследование на коклюш и паракоклюш
Исследуют носоглоточную слизь, носоглоточный смыв, транстрахеальные аспираты.
Фиксируют голову пациента, вводят тампон глубоко в ноздрю, оставляют там на 15–30 с, вынимают и помещают в стерильную пробирку. При сборе материала изо рта тампон вводят за мягкое нёбо, стараясь не задеть язык и миндалины. Снимают слизь с задней стенки глотки, осторожно вынимают тампон, который помещают в стерильную пробирку.
При сборе материала непосредственно на питательные среды материал получают, подставляя вертикально во время кашля больному чашку Петри со средой и держа ее на расстоянии 5-10 см в течение нескольких секунд, чтобы уловить 5–6 кашлевых толчков. Чашку с посевом быстро закрывают крышкой, заворачивают в бумагу и в вату.
Материал доставляют в лабораторию немедленно, при температуре 22–37 °C. В зимнее время в контейнер помещают грелки (35–40 °C).
Хранить при температуре 37 °C 2–3 ч.
Исследование катетеров
Взятие материала на исследование проводят врач-хирург или медсестра. Область кожи вокруг катетера обрабатывают тампоном с 70 %-ным спиртом. В условиях асептики извлекают катетер и стерильными инструментами отрезают 5 см дистального конца катетера прямо в стерильную пробирку или в стерильную чашку.
Кусочки катетера немедленно доставляют в лабораторию, чтобы предотвратить высыхание. Хранить при температуре +4 °C в течение 24 ч.
Исследование ран
Взятие проводят врач, медсестра. Кожу вокруг раны предварительно обрабатывают 70 %-ным спиртом или другим антисептиком. Некротические массы, детрит, гной удаляют стерильной салфеткой. Гной или другой экссудат собирают шприцем и переносят в максимально возможном количестве в стерильную пробирку. Взятие материала можно проводить стерильным тампоном. Материал берут двумя тампонами, один из которых используют для микроскопии, а другой для посева.
Патологический материал должен быть доставлен в лабораторию немедленно. Если это невозможно, образцы должны быть помещены в холодильник и храниться при температуре +4 °C в течение 2 ч. При взятии материала в коммерческие транспортные системы срок хранения увеличивается до 48–72 ч при температуре +5 °C.
Исследование транссудатов и экссудатов Исследуемый материал собирается в асептических условиях в стерильную емкость и немедленно доставляется в лабораторию. Если немедленная доставка невозможна, образцы хранятся в течение 2 ч при температуре +4 °C.
Исследование отделяемого глаз
Отделяемое (гной, секрет, соскоб) рекомендуется собирать до местного применения антибиотиков и других медикаментов или не ранее чем через 5–6 ч после отмены всех медикаментов и процедур.
Материал, собранный в кабинете врача (посевы, мазки), доставляется в лабораторию не позже 2 ч с момента посева. Тампоны могут храниться в течение 24 ч при температуре +4 °C в холодильнике.
При подозрении на дифтерию тампоны доставляются в лабораторию не позднее 3 ч после взятия материала. При увеличении срока доставки используют транспортные среды; срок доставки увеличивается на 24 ч. В осенне-зимнее время материал доставляется в сумках с грелками.
При подозрении на гонококковую инфекцию собранный материал доставляется в течение 1–2 ч в баклабораторию. При невозможности доставки в указанный срок при использовании среды сохранения материал может храниться при температуре +4 °C в холодильнике и отправляться в лабораторию не позже 24 ч с момента взятия материала.
Исследование желчи
Желчь берут при зондировании двенадцатиперстной кишки в процедурном кабинете. Сбор осуществляется в три отдельные стерильные пробирки по 5-10 мл каждой порции.
Желчь нужно доставить в лабораторию не позже 2 ч с момента взятия. Хранение в течение 24 ч при температуре +4 °C.
Следует обращать внимание на внешний вид получаемого материала, проверять его реакцию (рН), так как кислая реакция, наличие хлопьев свидетельствуют о примеси желудочного сока. Материал с содержанием желудочного сока непригоден для исследования на наличие энтеробактерий (табл. 19).
Таблица 19. Выбор материала и время взятия при биологических исследованиях
Глава 3 Лабораторные методы исследования в гематологии
Кровь и ее компоненты
Методы исследования компонентов крови
Кровь представляет собой жидкость сложного состава – плазму, в которой суспензированы форменные элементы: эритроциты (RBC), лейкоциты (WBC) и тромбоциты (PLT). При коагуляции крови после отделения сгустка остается жидкость, которая называется сывороткой. Из методов количественного и качественного исследования форменных элементов крови наиболее распространен общеклинический анализ крови: определение концентрации гемоглобина, цветового показателя, содержания эритроцитов, лейкоцитов, лейкоцитарной формулы, описание особенностей морфологической картины клеток крови, оценка скорости оседания эритроцитов. Дополнительно определяют количество ретикулоцитов и тромбоцитов. Эти исследования проводят всем стационарным больным и по показаниям – амбулаторным. Нередко ограничиваются недостаточно информативным определением количества гемоглобина, лейкоцитов и СОЭ (так называемая «тройка»).
Взятие и обработка крови
Исследование рекомендуется проводить утром натощак или через 1 ч после легкого завтрака. Кровь для проведения общего клинического анализа берут у пациента из пальца, вены или из мочки уха, а у новорожденных – из пятки. Не рекомендуется брать кровь после физической и умственной нагрузки, применения медикаментов, особенно при внутривенном или внутримышечном их введении, воздействия рентгеновских лучей и после физиотерапевтических процедур. В экстренных случаях этими правилами пренебрегают.
Взятие капиллярной крови
Капиллярную кровь получают с помощью прокола: 1 – мякоти концевых фаланг пальцев рук, 2 – мочки уха, 3 – у новорожденных – пятки или большого пальца ноги. Прокол должен быть глубокий, около 3–4 мм. Не следует брать кровь из воспаленных или поврежденных участков. Если место предполагаемого прокола холодное и цианотичное, его предварительно согревают массированием или погружением конечности в теплую воду. Кожу обрабатывают 70 %-ным этиловым спиртом и затем прокалывают. Первую каплю снимают ватным тампоном. Из следующих капель крови при легком надавливании быстро набирают необходимое количество крови. Кровь с поверхности пальца набирается индивидуальным стерильным капилляром Панченкова.
