По способу управления дозаторы делятся на дозаторы с ручным приводом, автоматическим приводом и автоматическим приводом и автоматическим управлением – электронные дозаторы.
Новым этапом в развитии технологии дозирования явились электронные пипетки. Финская компания BIOHIT предлагает широкую гамму однои многоканальных дозаторов.
Электронные микродозаторы имеют преимущества в сравнении с механическими:
1) возможность замены нескольких обычных и специальных пипеток одной электронной, в том числе таких, как диспенсер, дилютер и миксер;
2) возможность дозирования в диапазоне от 0,2 до 25 000 мкл;
3) более высокая точность дозирования и воспроизводимость по сравнению с механическими пипетками;
4) легкость управления и небольшой вес позволяют в течение рабочего дня выполнять более 1000 манипуляций;
5) автоматическая калибровка;
6) возможность подзарядки от сети.
ЦентрифугированиеДля разделения неоднородных жидких сред применяется центрифугирование. Разделение веществ с помощью центрифугирования основано на разном поведении частиц в центробежном поле.
В центробежном поле частицы, имеющие разную плотность, форму или размеры, осаждаются с разной скоростью.
Препаративное центрифугирование заключается в выделении биологического материала для последующих биохимических исследований. С помощью препаративного центрифугирования выделяют большое количество клеточных частиц для изучения их морфологии, структуры и биологической активности.
Препаративные центрифуги можно подразделить на 3 основные группы: центрифуги общего назначения, скоростные центрифуги и препаративные ультрацентрифуги.
Центрифуги общего назначения обеспечивают центрифугирование с максимальной скоростью 8 тыс. оборотов в минуту. Они отличаются друг от друга емкостью и имеют ряд сменных роторов: угловых и с подвесными стаканами или другими контейнерами.
Центрифужные пробирки вместе с их содержимым должны быть тщательно уравновешены. Необходимо загружать четное число пробирок в ротор, размещая их симметрично.
Скоростные центрифуги развивают скорость 25 тыс. оборотов в минуту. Камера ротора снабжена системой охлаждения для предотвращения нагревания, возникающего при вращении ротора.
Препаративные ультрацентрифуги обеспечивают центрифугирование со скоростью до 75 тыс. оборотов в минуту.
К центрифугам специального использования относятся рефрижераторные центрифуги, центрифуги с нагревательной рубашкой и др.
Аналитическое центрифугирование применяется для изучения чистых препаратов макромолекул или частиц, например рибосом.
В данном случае используется небольшое количество материала. Седиментация исследуемых частиц непрерывно регистрируется с помощью специальных оптических систем. Метод позволяет получать данные о чистоте, молекулярной массе и структуре материала.
Аналитические центрифуги развивают скорость до 100 тыс. оборотов в минуту. Через заданные промежутки времени седиментирующий материал можно фотографировать.
Термостатирующие устройстваДля проведения лабораторных анализов необходимы термостатирующие устройства, которые могут быть в виде самостоятельных приборов или могут входить в качестве блоков в общую структура автоматических анализаторов.
Термостаты по принципу передачи тепловой энергии подразделяются на жидкостные, суховоздушные, сухие.
В жидкостных термостатах передача тепловой энергии от источника тепла к объекту термостатирования происходит через жидкую среду. Такие термостаты обладают высокими метрологическими характеристиками.
В лабораторной практике широкое распространение получили суховоздушные и сухие термостаты. В суховоздушных термостатах тепловая энергия передается за счет циркулирующего потока воздуха. В сухих термостатах передача тепловой энергии идет через массивный металлический блок к объекту: пробирке, колбе.
Выбор способа термостатирования определяется назначением, емкостью и формой термостатируемого объекта.
Перемешивающие устройстваС целью ускорения проведения реакции и улучшения воспроизводимости результатов исследования применяются перемешивающие устройства. Выбор типа движения и его характеристик от простейшего качающего и вращательного движения до сложного знакопеременного ротационного движения зависит от конкретного назначения устройства. Перемешивание не должно вызывать появления пены и пузырей, которые могут повлиять на результаты измерений.
В автоматических анализаторах перемешивание может осуществляться непосредственно струей впрыскиваемого в кювету автоматическим дозатором реагента.
Оценка биожидкости для исследования Перед исследованием нужно оценить вид сыворотки и другие биожидкости.
Гемолиз
Гемолизированная сыворотка и плазма непригодны для анализа многих компонентов (железа, ЛДГ, кислой фосфатазы, АсАТ, АлАТ, калия, магния, креатинина, билирубина, белковых фракций, осадочных проб и т. д.) в силу различных причин (более высокого содержания компонентов в эритроцитах и перехода веществ из них в сыворотку (плазму при гемолизе); химической или оптической интерференции гемоглобина в методах.
Видимый гемолиз распознается при пограничной концентрации гемоглобина 0,2 г/л. Уже при концентрации 1,0 г/л сыворотка плазма окрашивается в отчетливо красный цвет.
При наличии гемолиза в данной сыворотке исследование не проводится и запрашивается свежая биожидкость для анализа.
Билирубинемия Интерферирует в методах, основанных на фотометрических измерениях в коротковолновой области спектра видимого света (300–500 нм). Однако путем постановки холостых проб на сыворотку или разведения пробы (креатинин, изменения порядка добавления реактивов, экстракции, снижающих влияние билирубина) удается получить приемлемые результаты.
Липемия При липемии происходит помутнение сыворотки или плазмы вследствие высокого содержания хиломикронов после приема пищи, богатой жирами. Отчетливая мутность возникает при концентрации триглицеридов более 4,5 ммоль/л. Степень и характер мутности, вплоть до сливкообразного характера сыворотки, зависят от состава и концентрации протеинов в ней. В некоторых случаях липемия может быть скорригирована постановкой специальных холостых проб. Следует запрашивать свежую биожидкость для исследования, взятую натощак.
Мутность материала
Мутность материала для исследования может быть обусловлена ростом бактерий, попавших в пробу, особенно при длительном транспорте и неправильном хранении. В этих случаях материал непригоден для анализа.
Помимо указанных, критериями неприемлемости биоматериала для анализа в лаборатории являются:
1) отсутствие номера на пробирках, перепутывание направлений на анализ;
2) несоответствие объема собранной крови количеству добавляемого антикоагулянта;
